Bile-Esculin Teste Presuntivo para Identificação de Enterococos e Estreptococos: Efeitos da Bile, Concentração, Técnica de Inoculação, e Tempo de Incubação

RESUMO

biliares-esculin teste é usado para diferenciar os enterococos e os estreptococos do grupo D de não-grupo D grupo viridans estreptococos. Os efeitos sobre o teste de desempenho da concentração de sais biliares, de inóculo, e a duração da incubação, foram examinados com 110 cepas de enterococos, 30 cepas de Streptococcus bovis, e 110 cepas de não-grupo D grupo viridans estreptococos. A sensibilidade óptima (> 99%) e a especificidade (97%) do teste bile-esculin podem ser obtidas com uma concentração bile de 40%, um inóculo normalizado de 106 UFC e incubação de 24 h.

o reconhecimento e diferenciação dos cocci Gram-positivos catalase-negativos, Alfa-hemolíticos e não-hemolíticos em pares e cadeias como enterococos; estreptococos do Grupo D (mainlyStreptococcus bovis); e estreptococos do Grupo D viridans não-grupo D são clinicamente importantes (10). O teste bile-esculin é amplamente utilizado para diferenciar enterococci e streptococci do Grupo D, que são tolerantes à bílis e podem hidrolizar esculina para esculetina, a partir do grupo não-grupo D viridans streptococci, que crescem mal na bílis. Descrita pela primeira vez em 1926, por Meyer e Schonfeld (8), a bile-esculin teste foi mostrado por Facklam e Moody (2, 3, 5) ter uma sensibilidade de 100% e uma especificidade de 97% para a identificação de enterococos e grupo D estreptococos. Estes resultados foram obtidos com agar inclinações contendo 4% oxgall (sais biliares), inoculados com 1 ou 2 gotas de uma recepção disponível 24 h Todd-Hewitt cultura do organismo (“o dia seguinte” de inoculação), e incubadas por 48 h. Na rotina de diagnóstico de bacteriologia, tal protocolo é impraticável, pois não necessita de 3 dias a partir do momento colônias são detectados no primário placas. A maioria dos manuais e manuais de procedimentos recomendam a inoculação de Agar diretamente de algumas colônias (inoculação”no mesmo dia”) em vez de uma subcultura de 24-h em caldo, mas os dados que suportam esta técnica alternativa não-padronizada estão faltando.

portanto, avaliamos a sensibilidade e especificidade do teste bile-esculin com dois métodos diferentes de inoculação do mesmo dia (padronizado e não normalizado) e dois tempos de incubação diferentes (24 e 48 h). Nós também comparamos os slants esculin contendo 2 e 4% oxgall em formulações atualmente disponíveis a partir de duas principais fontes comerciais nos Estados Unidos.

Catalase-negativos, cocos gram-positivos, em pares e em cadeias de formação de alfa-hemolíticas ou nonhemolytic colônias em 5% sheep blood agar que foram positivas para PYR (Trunculus, Dartford, no Reino Unido) e cresceu em tríptico caldo de soja contendo 6,5% de NaCl (Becton Dickinson Microbiology Systems , Cockeysville, Md.) foram identificados como enterococos; eles foram especializados com o sistema API Rapid Strep (bioMérieux Vitek, Hazelwood, Mo.). Catalase-negativo, cocci gram-positivo em pares e cadeias formando colónias Alfa-hemolíticas ou não-hemolíticas que eram negativas para a PIR, não cresceu em 6,5% NaCl, foi positivo para o antigénio do Grupo D por aglutinação em látex (Murex), e teve um padrão sugestivo (≥90% de probabilidade) bioquímico pelo sistema API Rapid Strep foram identificados como S. bovis. Cocci gram-positivo Catalase-negativo em pares e cadeias formando colónias Alfa-hemolíticas ou não-hemolíticas que eram negativas para o antigénio PYR e o Grupo D (E eram insolúveis na bílis se alfa-hemolíticos) eram chamados streptococos do grupo viridans.

Um total de 110 enterococcal cepas (34 Enterococcus faecalis, de 15 de Enterococcus faecium, e 61 nonhemolytic e nonspeciated cepas), 30 de S. bovis cepas (2 alfa-hemolíticas e 28 não-hemolíticas cepas), e 110 não-grupo D grupo viridans cepas de estreptococos (83 alfa-hemolíticas e 27 das estirpes não hemolíticas) foram testados. As estirpes foram isoladas consecutivamente a partir de culturas de sangue realizadas no Duke University Medical Center durante um período de 4 anos, exceto para 19 S. bovisstrains que foram obtidas a partir da Clínica Mayo.

Fresco (24 h), as bactérias foram inoculadas em três diferentes esculin agar inclinações, contendo ou não bile (BDMS), 2% oxgall (equivalente a 20% de bile) (BDMS), ou 4% oxgall (equivalente a 40% de bile) (Remel, Lenexa, Kans.). Exceto oxgall, as composições dos três meios eram as mesmas. Para cada meio, foram utilizadas as duas seguintes técnicas de inoculação: (i) inoculação direta e não padronizada em forma de S de 1 a 10 colônias e (ii) inoculação indireta e padronizada de 10 µl (ciclo calibrado) de uma suspensão padrão de 0,5 McFarland de bactérias em água desionizada estéril. As lamas foram incubadas a 35 ° C no ar ambiente (2) com tampas soltas durante 48 horas. As leituras foram feitas a 24 e 48 h. uma reação foi considerada positiva quando metade ou mais do meio foi escurecido (4).

com uma excepção, todas as 110 estirpes enterocócicas apresentaram reacções positivas claras após 24 e 48 h de incubação (sensibilidade de 99%). O inóculo padronizado (aproximadamente 106 UFC) era tão sensível quanto o inóculo mais pesado e não padronizado. Facklam e Moody, a utilização de um inóculo de 107 a 108 UFC em agar inclinações, informou uma sensibilidade de 100% em 48 h, mas encontra-se a 2 de 76 (5) e 6 de 157 (3) enterococcal variedades de ser bile-esculin negativo (98% de sensibilidade), após 24 h de incubação. Swan (13), utilizando um inóculo não normalizado descrito como pesado, bem como placas de ágar em que qualquer escurecimento foi considerado um resultado positivo, obteve uma sensibilidade de 100% a 24 h com 121 estirpes enterocócicas. No entanto, com base nas publicações do Facklam, a maioria dos manuais e manuais de procedimentos recomendam incubação para 48 horas antes de relatar um resultado negativo.

todas as 30 estirpes de S. bovis foram positivas a 24 e 48 h, independentemente da concentração biliar ou do método de inoculação (sensibilidade a 100%). O Facklam (3) apresentou uma sensibilidade de 94 e 100% às 24 e 48 h, respectivamente, com 37 estirpes estreptocócicas do Grupo D.

a Tabela 1 apresenta as percentagens de testes falso-positivos à bílis-esculina para 110 estirpes estreptocócicas do grupo não-grupo D de viridans. Descobrimos que a especificidade (100% menos a porcentagem de falsos positivos) foi máxima (97%), com um inóculo padronizado de listras em agar inclinações contendo 4% oxgall e leitura após 24 h. Falsos positivos foram obtidos com duas Streptococcus milleriand um Streptococcus lactis subsp. diacetilactisstrainas. A falta de padronização do inóculo, a diminuição da concentração de oxgall para 2% e o prolongamento do tempo de incubação para 48 h aumentaram o número de falsos positivos para um máximo de 24%. Em estudos anteriores com um ágar selectivo de esculina contendo azida de sódio e apenas 10% bílis, foram frequentes reacções positivas com estreptococos do grupo viridans não-grupo D (6, 11, 12). Não foram publicados anteriormente dados sobre a utilização de um meio contendo 2% de oxgall. Os nossos resultados sugerem que esta concentração é subóptima. Utilizando 4% de oxgall, o Swan (13) encontrou duas estirpes estreptocócicas do grupo viridans tolerantes à bílis de 21 isolados; nenhuma das estirpes, contudo, hidrolisou a esculina a 24 h. Facklam et al. especificidades relatadas de 99% a 24 h (3) e 81 (4) a 97% (3) a 48 h com 4% de oxgall.

ver esta tabela:

  • ver linha
  • ver popup
Quadro 1.

Falso-positivo reações de 110 non-grupo D grupo viridans cepas de estreptococos no esculin inclinações com 0, 20 e 40% de bile

Uma diferença marcante foi encontrado quando os subgrupos de alfa-hemolíticas e nonhemolytic não-grupo D grupo viridans estreptococos foram comparados para o número de falsos positivos. Para alfa-hemolíticas cepas, este número foi de 0% após 24 h e 3%, após 48 h, enquanto que para o das estirpes não hemolíticas foi de 11% após 24 h e 33% após 48 h, com 4% oxgall e um inóculo padronizado (P = 0,017 24-h valores; bicaudal, teste exato de Fisher). Tal observação não foi notificada anteriormente.

para amostras que não sejam de sangue e locais normalmente estéreis, um fluxograma baseado no teste da bílis-esculina combinado com uma tolerância de NaCl de 6,5% ou presença de PIR é suficiente para a identificação fiável dos enterococos. Os organismos bílis-esculin-positivos do sangue e os locais normalmente estéreis devem ser especializados. Especiação de enterococci é útil por razões epidemiológicas e porque E. faecium e outras espécies tendem a ser mais resistentes aos antibióticos do que E. fecalis (8, 9). Uma identificação definitiva de SF. bovis é importante, uma vez que o organismo está associado ao carcinoma colônico, que deve ser descartado nesses pacientes (7). Por outro lado, relatórios falsos-positivos de ofS. o bovis pode levar a investigações desnecessárias. A especiação de organismos bílis-esculin-positivos permitirá também a detecção de streptococos do Grupo D viridans falsos-positivos. Erros terapêuticos podem ocorrer com a identificação errada de estreptococos e enterococos (1). A especiação de rotina de organismos biliesesculin negativos não é necessária, uma vez que os enterococos e os estreptococos do Grupo D raramente dão reacções falsas-negativas.

Em conclusão, a bile-esculin teste funciona bem rapidamente separar os enterococos e os estreptococos do grupo D de não-grupo D grupo viridans estreptococos a baixo custo e com boa sensibilidade (>99%) e especificidade (97%), desde que realizada em ágar inclinações contendo 40% de bile, feito com um inóculo padronizado (10 µl de um padrão de McFarland de 0,5 bacterianas em suspensão), e leia em 24 h.

AGRADECIMENTOS

C. Chuard foi suportado por uma bolsa da Academia Suíça de Ciências Médicas.Franklin R. Cockerill III gentilmente forneceu 19 S. bovisstrains das acções da Clínica Mayo, Rochester, Minn.

notas de rodapé

  • Copyright © 1998 American Society for Microbiology
  1. 1.↵
    1. Bayer, A. S.,
    2. Yoshikawa T. T.,
    3. Nolan F.,
    4. Shibata S.,
    5. Guze L. B.Meningite estreptocócica não do Grupo D não identificada como meningite enterocócica. Implicações diagnósticas e terapêuticas de um diagnóstico errado por Microbiologia de rastreio.Arco. Estagiario. Med.138197816451647
  2. 2.↵
    1. Facklam R. R.

    reconhecimento de espécies estreptocócicas do Grupo D de origem humana por testes bioquímicos e fisiológicos.Appl. Microbiol.23197211311139

  3. 3.↵
    1. Facklam R. R.

    comparação de vários suportes laboratoriais para a identificação presumível de enterococos e estreptococos do Grupo D.Appl. Microbiol.261973138145

  4. 4.↵
    1. Facklam R. R.,
    2. Padula J. F.,
    3. Wortham E. C.,
    4. Cooksey, R. C.,
    5. Rountree H. A.

    Presuntivo de identificação do grupo A, B, e D estreptococos em placa de agar mídia.J. Clin. Microbiol.91979665672

  5. 5.↵
    1. Facklam R. R.,
    2. Moody’M. D.

    identificação presumida de estreptococos do Grupo D: O ensaio bílis-esculina.Appl. Microbiol.201970245250

  6. 6.↵
    1. Isenberg D. I.,
    2. Goldberg D.,
    3. Sampson J.

    Laboratory studies with a selective Enterococcus medium.Appl. Microbiol.201970433436

  7. 7.↵
    1. Klein, R. S.,
    2. Recco R. A.,
    3. Catalano M. T.,
    4. Edberg S. C.,
    5. Casey J. I.,
    6. Steigbigel N. H.Associação de Streptococcus bovis com carcinoma do cólon.N. Engl. J. Med.2971977800802
  8. 8.↵
    1. Meyer, K.,
    2. Schonfeld H.

    Über die Unterscheidung des Enterococcus von Streptococcus viridans und die Beziehung beider zum Streptococcus lactis.Zentralbl. Bakteriol. Parasitenkol. Infektionskr. Hyg. Abt. 1 Orig.991926402416

  9. 9.↵
    1. Murray B. E.

    the life and times of the enterococcus.Clin. Microbiol. Rev.319904665

    1. Patterson, J. E.,
    2. Sweeney A. H.,
    3. Simms M.,
    4. Carley N.,
    5. Mangi R.,
    6. Sabetta J.,
    7. Lyons, R. W.

    Uma análise de 110 graves infeções enterocócicas.Medicine741995191200

  10. 11.↵
    1. Pavlova M. T.,
    2. Brezensky F. T.,
    3. Litsky W.

    Avaliação de vários meios para o isolamento, enumeração e identificação de estreptococos fecais provenientes de fontes naturais.Laboratório De Saúde. Ciência.91972289298

  11. 12.↵
    1. Sabbaj J.,
    2. Sutter, V. L.,
    3. Finegold S. M.

    Comparação de meio selectivo para o isolamento de presuntivo os estreptococos do grupo D, a partir de fezes humanas.Appl. Microbiol.22197110081011

  12. 13.↵
    1. Swan A.

    the use of a bile-aesculin medium and of Maxted’s technique of Lancefield grouping in the identification of enterococci (group D streptococci).J. Clin. Pathol.71954160163